Biology · Livro 5 · Bachelor Year 3

Biologia universitária — 3.º ano

Biologia universitária — 3.º ano · Bachelor Year 3

9Dinâmica do citoesqueleto e motilidade celular

Um neutrófilo que persegue uma bactéria por um tecido rasteja a dez micrômetros por minuto, mudando de direção em segundos quando o cheiro se desloca. Uma vesícula de neurotransmissor feita no corpo celular de um neurônio motor viaja um metro axônio abaixo até o pé, puxada por uma proteína motora que dá passos de oito nanômetros, cem por segundo, durante quinze dias. Os cílios que revestem a traqueia batem doze vezes por segundo em ondas coordenadas que levam à garganta a poeira inalada de um dia. Tudo isso é feito por três tipos de filamento proteico que se montam e se desmontam em segundos, e por motores que queimam uma molécula de ATP por passo. O citoesqueleto não é um esqueleto no sentido de um arcabouço fixo; é um conjunto de polímeros em renovação constante, cuja dinâmica é o mecanismo da forma, da divisão e do movimento. Este capítulo trata dos polímeros e de sua cinética, dos motores e da física que os limita, do rastejamento de uma célula e do batimento de cílios e flagelos.

9.1 Três polímeros

Definição 9.1 (Filamentos de actina, microtúbulos, filamentos intermediários)

Um filamento de actina é um polímero helicoidal de duas fitas de actina globular, com 7nm7\,\mathrm{nm} de espessura, cada subunidade ocupando 2.7nm2.7\,\mathrm{nm} ao longo do eixo, polar: a extremidade farpada (mais) cresce mais depressa que a extremidade pontiaguda (menos), e cada subunidade carrega um ATP que é hidrolisado depois da incorporação. Um microtúbulo é um tubo oco de 25nm25\,\mathrm{nm} de diâmetro externo, construído com treze protofilamentos de dímeros de αβ\alpha\beta-tubulina (8nm8\,\mathrm{nm} por dímero), também polar, com sua extremidade mais crescendo mais depressa e sua extremidade menos em geral ancorada no centrossomo perto do núcleo; a subunidade β\beta hidrolisa seu GTP depois da incorporação. Um filamento intermediário é uma corda de 10nm10\,\mathrm{nm} feita de proteínas em hélice enrolada (queratinas nos epitélios, vimentina no mesênquima, neurofilamentos nos axônios, lâminas sob o envoltório nuclear), apolar, sem nucleotídeo e bem mais estável — um cabo que suporta tensão, e não um trilho dinâmico. A actina fica sobretudo sob a membrana plasmática e nas protrusões; os microtúbulos irradiam do centrossomo e servem de trilhos do transporte de longa distância e de fuso; os filamentos intermediários dão a uma célula e a seu núcleo sua resiliência mecânica.

Os três filamentos em escala de diâmetro. Os polímeros de actina e de tubulina são polares e hidrolisam um nucleotídeo depois da montagem, que é o que os torna dinâmicos; o filamento intermediário é uma corda apolar feita para durar.
Os três filamentos em escala de diâmetro. Os polímeros de actina e de tubulina são polares e hidrolisam um nucleotídeo depois da montagem, que é o que os torna dinâmicos; o filamento intermediário é uma corda apolar feita para durar.
À esquerda: actina (verde) num fibroblasto em migração — fibras de estresse atravessando o corpo, uma malha densa na borda de avanço larga, à direita. À direita: microtúbulos (laranja) irradiando do centrossomo ao lado do núcleo (azul) até a margem da célula. À esquerda: actina (verde) num fibroblasto em migração — fibras de estresse atravessando o corpo, uma malha densa na borda de avanço larga, à direita. À direita: microtúbulos (laranja) irradiando do centrossomo ao lado do núcleo (azul) até a margem da célula.
À esquerda: actina (verde) num fibroblasto em migração — fibras de estresse atravessando o corpo, uma malha densa na borda de avanço larga, à direita. À direita: microtúbulos (laranja) irradiando do centrossomo ao lado do núcleo (azul) até a margem da célula.

9.2 A cinética de um polímero

Teorema 9.2 (Concentração crítica e treadmilling)

Seja uma extremidade de filamento que acrescenta subunidades à taxa konCk_{\text{on}}C, com CC a concentração de monômero livre, e as perde à taxa koffk_{\text{off}}. A extremidade cresce se CC excede sua concentração crítica Cc=koff/konC_{c} = k_{\text{off}}/k_{\text{on}} e encolhe abaixo dela. Se as duas extremidades têm concentrações críticas diferentes, Cc+<CcC_{c}^{+} < C_{c}^{-}, então, no estado estacionário em que o filamento nem se alonga nem se encurta, a concentração de monômero é

Css=koff++koffkon++kon,Cc+<Css<Cc,C_{\text{ss}} = \frac{k_{\text{off}}^{+} + k_{\text{off}}^{-}} {k_{\text{on}}^{+} + k_{\text{on}}^{-}}, \qquad C_{c}^{+} < C_{\text{ss}} < C_{c}^{-},

e a extremidade mais cresce enquanto a extremidade menos encolhe à mesma taxa J=kon+Csskoff+>0J = k_{\text{on}}^{+}C_{\text{ss}} - k_{\text{off}}^{+} > 0: as subunidades fluem pelo filamento da extremidade mais para a menos — o treadmilling — ao custo de um nucleotídeo hidrolisado por subunidade.

Demonstração. A taxa líquida numa extremidade é konCkoffk_{\text{on}}C - k_{\text{off}}, nula em CcC_{c}. Comprimento constante exige que a soma das duas taxas líquidas se anule, o que dá CssC_{\text{ss}}; ela fica entre as duas concentrações críticas porque é uma média ponderada delas (Css=(kon+Cc++konCc)/(kon++kon)C_{\text{ss}} = (k_{\text{on}}^{+}C_{c}^{+} + k_{\text{on}}^{-}C_{c}^{-})/(k_{\text{on}}^{+} + k_{\text{on}}^{-})). Acima de Cc+C_{c}^{+} a extremidade mais cresce; abaixo de CcC_{c}^{-} a extremidade menos encolhe; o fluxo é a taxa líquida da extremidade mais. Duas extremidades do mesmo polímero químico teriam a mesma CcC_{c} (a mesma constante de equilíbrio), de modo que uma diferença exige que a subunidade mude depois da incorporação — a hidrólise do ATP ou do GTP —, o que faz as extremidades diferirem e paga pelo fluxo.

Exemplo 9.3 (Actina no tubo de ensaio)

Para a actina-ATP, kon+=11.6µM1s1k_{\text{on}}^{+} = 11.6\,\text{µ}\mathrm{M}^{-1}\,\mathrm{s}^{-1}, koff+=1.4s1k_{\text{off}}^{+} = 1.4\,\mathrm{s}^{-1} (Cc+=0.12µMC_{c}^{+} = 0.12\,\text{µ}\mathrm{M}); kon=1.3µM1s1k_{\text{on}}^{-} = 1.3\,\text{µ}\mathrm{M}^{-1}\,\mathrm{s}^{-1}, koff=0.8s1k_{\text{off}}^{-} = 0.8\,\mathrm{s}^{-1} (Cc=0.6µMC_{c}^{-} = 0.6\,\text{µ}\mathrm{M}). Então Css=2.2/12.9=0.17µMC_{\text{ss}} = 2.2/12.9 = 0.17\,\text{µ}\mathrm{M} e J=11.6×0.171.4=0.6J = 11.6\times 0.17 - 1.4 = 0.6 subunidade por segundo: 1.6nm/s1.6\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}, imperceptível. Numa célula os filamentos fazem treadmilling cem vezes mais depressa, porque a cofilina corta e retira a actina-ADP velha das extremidades pontiagudas, a profilina carrega actina-ATP fresca nas extremidades farpadas, e proteínas de capeamento decidem quais extremidades farpadas podem crescer: o polímero nu fornece o mecanismo, os reguladores fornecem a velocidade.

Taxa líquida de crescimento de cada extremidade de um filamento de actina contra o monômero livre, com as constantes de taxa do exemplo. Entre as duas concentrações críticas a extremidade farpada cresce e a pontiaguda encolhe; na linha tracejada as duas se cancelam exatamente e o filamento faz treadmilling.
Taxa líquida de crescimento de cada extremidade de um filamento de actina contra o monômero livre, com as constantes de taxa do exemplo. Entre as duas concentrações críticas a extremidade farpada cresce e a pontiaguda encolhe; na linha tracejada as duas se cancelam exatamente e o filamento faz treadmilling.

Definição 9.4 (Instabilidade dinâmica)

Os microtúbulos fazem algo mais estranho que o treadmilling. Uma extremidade mais em crescimento carrega um capuz de GTP de dímeros recém-acrescentados; atrás dele o GTP é hidrolisado, e a tubulina-GDP, que prefere uma conformação curva, é mantida reta na rede sob tensão. Se o capuz se perde — a extremidade faz uma pausa, ou o crescimento desacelera —, os protofilamentos tensionados se descascam para fora e o microtúbulo encurta a 300nm/s300\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}, vinte vezes sua taxa de crescimento: uma catástrofe, que termina quando um dímero de GTP pousa e um novo capuz se forma (um resgate). Numa mesma população, portanto, alguns microtúbulos crescem enquanto vizinhos colapsam: é a instabilidade dinâmica. Ela permite a uma célula explorar seu próprio volume com extremidades mais a cada poucos minutos e reconstruir todo o arranjo quando o centrossomo se move ou a célula se divide. A célula a ajusta por meio de proteínas que acompanham extremidades mais, estabilizam (tau, MAP2), cortam (katanina) ou despolimerizam (cinesina-13) microtúbulos; os fármacos colchicina e os alcaloides da vinca bloqueiam a montagem e o taxol bloqueia a desmontagem, todos eles venenos do fuso mitótico usados contra o câncer.

Evidência. Mitchison e Kirschner (1984) observaram populações de microtúbulos crescidos a partir de centrossomos in vitro. Ao diluir a tubulina abaixo da concentração crítica, esperavam que todos os microtúbulos encurtassem devagar; em vez disso, o número de microtúbulos caiu enquanto os sobreviventes continuavam crescendo — alguns haviam se desmontado por completo e depressa, outros nem um pouco. Microtúbulos individuais filmados mais tarde por videomicroscopia alternavam abruptamente entre fases de crescimento constante e de encurtamento rápido. O capuz de GTP explicava as duas coisas: só as extremidades com capuz crescem, e a perda do capuz é um evento raro, de tudo ou nada.

9.3 Motores

Definição 9.5 (Proteínas motoras)

Uma proteína motora converte a energia livre da hidrólise do ATP em movimento dirigido ao longo de um filamento: as miosinas ao longo da actina (a miosina II, o motor muscular e contrátil, rumo à extremidade farpada; a miosina V, uma carregadora de vesículas de duas cabeças que dá passos de 36nm36\,\mathrm{nm}), as cinesinas ao longo dos microtúbulos rumo à extremidade mais (a cinesina-1 dá passos de 8nm8\,\mathrm{nm}, um dímero de tubulina, por ATP, mão sobre mão, a cerca de 800nm/s800\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}) e as dineínas rumo à extremidade menos (a dineína citoplasmática, com sua adaptadora dinactina, arrasta a carga de volta ao centro da célula; as dineínas axonemais dobram os cílios). Um motor é processivo se dá muitos passos antes de se soltar: a cinesina-1 caminha cerca de um micrômetro, uma centena de passos, sozinha; uma única cabeça de miosina II dá uma remada e solta, de modo que o músculo precisa de centenas de cabeças trabalhando num mesmo filamento. Os motores leem a polaridade do trilho, e por isso a geografia de uma célula — extremidades mais na periferia, extremidades menos no centro — é um mapa de aonde cada motor levará sua carga.

Evidência. Vale, Reese e Sheetz (1985) descobriram a cinesina como a proteína do axoplasma de lula que fazia esferas de látex deslizarem ao longo de microtúbulos no sentido mais, e nos anos seguintes a estrutura de duas cabeças, o sentido de cada família e a parceira retrógrada dineína foram esclarecidos. Svoboda, Schmidt, Schnapp e Block (1993) seguraram numa pinça óptica uma esfera que carregava uma única cinesina e registraram sua posição com resolução de nanômetros: a esfera avançava em passos discretos de 8nm8\,\mathrm{nm}, um por ATP em baixa concentração de ATP, e parava contra uma força de cerca de 6pN6\,\mathrm{pN}. A escada molecular foi vista diretamente.

A cinesina em seu trilho e sua pegada numa pinça óptica. As duas cabeças se alternam, e cada passo avança o motor por um dímero de tubulina, 8\, nm; em ATP baixo os passos são separados por esperas pelo nucleotídeo seguinte e a escada é vista diretamente.
A cinesina em seu trilho e sua pegada numa pinça óptica. As duas cabeças se alternam, e cada passo avança o motor por um dímero de tubulina, 8nm8\,\mathrm{nm}; em ATP baixo os passos são separados por esperas pelo nucleotídeo seguinte e a escada é vista diretamente.

Proposição 9.6 (O que a física permite a um motor)

A hidrólise de um ATP na célula libera cerca de 50kJ/mol50\,\mathrm{kJ}/\mathrm{mol}, isto é, 8×10208\times 10^{-20} J por molécula. Um motor que avança dd por ATP contra uma força FF realiza um trabalho FdFd, de modo que sua força de parada não pode exceder Fmax=ΔG/dF_{\max} = \Delta G/d: para o passo de 8nm8\,\mathrm{nm} da cinesina, 10pN10\,\mathrm{pN}; os 6pN6\,\mathrm{pN} medidos significam uma eficiência perto de 60%60\,\%, maior que a de qualquer motor térmico. A energia térmica kBT=4.1×1021k_{B}T = 4.1\times 10^{-21} J, ou 4.1pNnm4.1\,\mathrm{pN}\,\mathrm{nm}, é apenas um vigésimo da energia do ATP, mas é entregue ao motor sem parar como chutes brownianos; um motor é um dispositivo que os retifica, deixando a cabeça difundir para a frente e ligando-se quando ela pousa, de modo que a energia química é gasta em tornar o passo irreversível, e não em empurrar. O transporte por motor vence a difusão em qualquer distância que importe numa célula grande: uma vesícula com coeficiente de difusão D=1µm2/sD = 1\,\text{µ}\mathrm{m}^{2}/\mathrm{s} precisa de um tempo L2/2DL^{2}/2D para vagar uma distância LL — meio segundo para um micrômetro, mas 1600016\,000 anos para um metro de axônio —, ao passo que um motor a 1µm/s1\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{s} cobre o metro em doze dias.

Demonstração. Admitido neste nível.

9.4 Como uma célula rasteja

Definição 9.7 (Migração celular)

Uma célula que rasteja repete um ciclo de quatro etapas. A protrusão: na borda de avanço a actina polimeriza contra a membrana numa lâmina, o lamelipódio, cuja rede ramificada é construída pelo complexo Arp2/3, que nucleia um filamento novo a partir do flanco de um já existente a 7070{}^{\circ}, enquanto a proteína de capeamento limita o crescimento de cada filamento e a cofilina recicla a rede alguns micrômetros atrás; filopódios em forma de dedo, de filamentos em feixe, sondam à frente. A adesão: a nova protrusão se prende ao substrato por meio das integrinas, receptores transmembrana que ligam proteínas da matriz do lado de fora e, por meio de proteínas adaptadoras, a actina do lado de dentro, agrupadas em adesões focais. A contração: a miosina II puxa as fibras de estresse ancoradas nas adesões, arrastando o corpo celular para a frente. A retração: as adesões da retaguarda se soltam e a cauda é recolhida. O ciclo é coordenado por três GTPases pequenas da família Rho — a Rac impulsiona os lamelipódios, a Cdc42 os filopódios, a Rho as fibras de estresse e a contração —, que são os alvos dos receptores que leem a direção de um gradiente químico (quimiotaxia) ou a rigidez e o padrão do substrato.

O ciclo do rastejamento, com o sentido da esquerda para a direita como o do deslocamento: a polimerização ramificada de actina empurra a frente para fora, as integrinas a ancoram, a miosina puxa o corpo para a frente, e a retaguarda se solta.
O ciclo do rastejamento, com o sentido da esquerda para a direita como o do deslocamento: a polimerização ramificada de actina empurra a frente para fora, as integrinas a ancoram, a miosina puxa o corpo para a frente, e a retaguarda se solta.

Exemplo 9.8 (O cometa da Listeria)

A bactéria Listeria monocytogenes, uma vez dentro de uma célula, exibe em sua superfície uma única proteína, a ActA, que recruta o complexo Arp2/3 do hospedeiro. A actina polimeriza na superfície bacteriana e fica para trás como uma cauda; a bactéria é empurrada pelo citoplasma a até 0.5µm/s0.5\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{s} e para dentro das células vizinhas sem jamais deixar o citosol. A cauda é um lamelipódio virado do avesso, com uma proteína onde a célula usa dezenas, e mostrou que a polimerização da actina sozinha — sem motor algum — gera a força da protrusão: cada subunidade que se insere entre a rede e a membrana, quando uma flutuação térmica abriu uma fresta, empurra a frente 2.7nm2.7\,\mathrm{nm} adiante como uma catraca.

Método 9.9 (Observar a renovação dos polímeros)

Para medir a dinâmica de um sistema de filamentos numa célula viva: (1) expresse a subunidade fundida a uma proteína fluorescente em nível baixo, de modo que ela seja incorporada ao polímero endógeno; (2) ou branqueie uma pequena região com um pulso intenso de laser e filme o retorno da fluorescência à medida que subunidades não branqueadas entram por troca (recuperação de fluorescência após fotobranqueamento, FRAP) — o tempo de meia-recuperação é o tempo de residência das subunidades, e a fração que nunca se recupera é a reserva imóvel; ou (3) expresse tão pouca subunidade marcada que o polímero apareça como speckles esparsos, e rastreie-os: seu movimento é o fluxo do treadmilling, e seu surgimento e desaparecimento são a montagem e a desmontagem. Num lamelipódio os speckles fluem para trás a um micrômetro por minuto em relação ao substrato enquanto a borda avança: a rede é construída na frente e consumida alguns micrômetros atrás dela.

9.5 Cílios, flagelos e um motor rotativo

Definição 9.10 (Cílios e flagelos)

Um cílio ou flagelo eucarionte é uma extensão recoberta de membrana construída sobre o axonema: nove microtúbulos duplos em anel em torno de um par central, mantidos por ligações de nexina e raios radiais, e crescidos a partir de um corpúsculo basal, um centríolo modificado. As dineínas axonemais presas a cada duplo caminham ao longo do duplo vizinho rumo à extremidade menos dele, na base; como os duplos estão amarrados uns aos outros, eles não podem deslizar livremente, e o deslizamento é convertido em dobramento, propagado ao longo do axonema como uma onda pela alternância das dineínas ativas de um lado do anel para o outro. Um cílio tem de 5 a 10µm5\text{ a }10\,\text{µ}\mathrm{m} de comprimento e bate de 10 a 2010\text{ a }20 vezes por segundo; um flagelo de espermatozoide tem 50µm50\,\text{µ}\mathrm{m} e ondula. As proteínas de um cílio são levadas do corpo celular para cima pela cinesina-2 e de volta pela dineína-2 ao longo dos duplos — o transporte intraflagelar —, que é também como se constrói um cílio primário não móvel, presente, um por célula, na maioria das células de vertebrado; esse cílio é uma antena sensorial, que abriga receptores para a luz (o segmento externo do bastonete), odores, fluxo e sinais do desenvolvimento, e cujos defeitos causam as ciliopatias: rins policísticos, degeneração da retina, obesidade, dedos extras.

O axonema em corte transversal (à esquerda): nove duplos em torno de um par central, com braços de dineína e raios radiais. À direita: as dineínas deslizam um duplo ao longo do seguinte e, como os duplos estão amarrados, o deslizamento vira um dobramento que viaja ao longo do cílio.
O axonema em corte transversal (à esquerda): nove duplos em torno de um par central, com braços de dineína e raios radiais. À direita: as dineínas deslizam um duplo ao longo do seguinte e, como os duplos estão amarrados, o deslizamento vira um dobramento que viaja ao longo do cílio.
À esquerda: o epitélio ciliado da traqueia no microscópio eletrônico de varredura, um gramado de cílios entre células secretoras de muco em forma de cúpula. À direita: o motor flagelar bacteriano, um motor rotativo de anéis no envoltório celular movido pelo fluxo de prótons. À esquerda: o epitélio ciliado da traqueia no microscópio eletrônico de varredura, um gramado de cílios entre células secretoras de muco em forma de cúpula. À direita: o motor flagelar bacteriano, um motor rotativo de anéis no envoltório celular movido pelo fluxo de prótons.
À esquerda: o epitélio ciliado da traqueia no microscópio eletrônico de varredura, um gramado de cílios entre células secretoras de muco em forma de cúpula. À direita: o motor flagelar bacteriano, um motor rotativo de anéis no envoltório celular movido pelo fluxo de prótons.

Proposição 9.11 (O motor flagelar bacteriano)

O flagelo bacteriano não tem parentesco com o eucarionte: um filamento helicoidal rígido de flagelina, de 20nm20\,\mathrm{nm} de espessura e vários micrômetros de comprimento, girado por um motor rotativo embutido no envoltório celular — um rotor de umas quarenta e cinco proteínas cercado por um anel de unidades estatoras, cada uma um canal pelo qual os prótons fluem gradiente abaixo para dentro da célula, cerca de mil prótons por volta. O motor gira a até 300Hz300\,\mathrm{Hz}, inverte o sentido em um milissegundo e desenvolve um torque de uns 1000pNnm1000\,\mathrm{pN}\,\mathrm{nm}; é construído com umas vinte proteínas cujos genes são ligados na ordem em que as peças são montadas, de dentro para fora. Em E. coli, a rotação anti-horária reúne os vários flagelos num propulsor e a célula corre em linha reta; uma troca para o sentido horário desfaz o feixe e a célula tomba rumo a uma nova direção aleatória. A via de quimiotaxia não enviesa nada além da frequência dos tombos — menos quando as condições melhoram — e isso basta para subir um gradiente.

Observação 9.12 (O citoesqueleto é um verbo)

Quase nada do que se descreveu neste capítulo é uma estrutura no sentido em que um osso é: o lamelipódio é uma onda de polimerização, o fuso do Capítulo 10 é um estado estacionário de microtúbulos que crescem e colapsam, o batimento do cílio é um padrão de alternância de motores. A renovação não é um custo que a célula tolera, mas o próprio mecanismo, e é por isso que cada um desses sistemas funciona à base de hidrólise de nucleotídeo e para em minutos quando o ATP se esgota, e por isso que os venenos que congelam os polímeros num estado ou no outro — taxol ou colchicina, faloidina ou citocalasina — são igualmente letais.

9.6 Exercícios

Exercício 9.1

Compare os filamentos de actina, os microtúbulos e os filamentos intermediários quanto a diâmetro, subunidade, polaridade, nucleotídeo e papel típico.

Solução

Solução de Exercício 9.1.

Actina: 7nm7\,\mathrm{nm}, actina globular, polar (farpada/pontiaguda), ATP; córtex, protrusão, contração com a miosina. Microtúbulo: 25nm25\,\mathrm{nm}, dímero de αβ\alpha\beta-tubulina, polar (mais/menos), GTP; transporte de longa distância, fuso, cílios. Filamento intermediário: 10nm10\,\mathrm{nm}, proteínas em hélice enrolada (queratina, vimentina, lâmina), apolar, sem nucleotídeo; resistência mecânica da célula e do núcleo.

Exercício 9.2

Defina concentração crítica. Por que as duas extremidades de um filamento de actina têm concentrações críticas diferentes, e o que aconteceria se elas fossem iguais?

Solução

Solução de Exercício 9.2.

A concentração de monômero em que uma extremidade não cresce nem encolhe, koff/konk_{\text{off}}/k_{\text{on}}. As duas extremidades diferem porque a subunidade hidrolisa seu ATP depois da incorporação, de modo que as extremidades apresentam espécies químicas diferentes (actina-ATP chegando à extremidade farpada, actina-ADP saindo da pontiaguda) com afinidades diferentes. Com concentrações críticas iguais haveria um único equilíbrio: sem treadmilling, sem fluxo e sem meio de pagar por uma renovação dirigida.

Exercício 9.3

Nomeie um motor para cada caso: vesícula rumo à periferia da célula sobre microtúbulos; vesícula rumo ao centro; contração de uma fibra de estresse; dobramento de um cílio. Dê o sentido que cada um toma em seu trilho.

Solução

Solução de Exercício 9.3.

Periferia sobre microtúbulos: cinesina, rumo à extremidade mais. Centro: dineína citoplasmática, rumo à extremidade menos. Fibra de estresse: miosina II, rumo à extremidade farpada da actina. Cílio: dineína axonemal, rumo à extremidade menos do duplo vizinho (a base).

Exercício 9.4

Liste as quatro etapas do ciclo de rastejamento e a GTPase da família Rho que governa cada uma das três primeiras.

Solução

Solução de Exercício 9.4.

Protrusão (Rac para os lamelipódios, Cdc42 para os filopódios), adesão (integrinas; a jusante de Rac e de Rho), contração (Rho, por meio da miosina II), retração da retaguarda (soltura das adesões, impulsionada pela contração).

Exercício 9.5 ★★

A extremidade mais de um polímero tem kon=5µM1s1k_{\text{on}} = 5\,\text{µ}\mathrm{M}^{-1}\,\mathrm{s}^{-1}, koff=1s1k_{\text{off}} = 1\,\mathrm{s}^{-1}, e sua extremidade menos kon=1µM1s1k_{\text{on}} = 1\,\text{µ}\mathrm{M}^{-1}\,\mathrm{s}^{-1}, koff=0.8s1k_{\text{off}} = 0.8\,\mathrm{s}^{-1}. Determine as duas concentrações críticas, a concentração estacionária e a taxa de treadmilling em subunidades por segundo e, para subunidades de 2.7nm2.7\,\mathrm{nm}, em nanômetros por segundo.

Solução

Solução de Exercício 9.5.

Cc+=1/5=0.2µMC_{c}^{+} = 1/5 = 0.2\,\text{µ}\mathrm{M}, Cc=0.8/1=0.8µMC_{c}^{-} = 0.8/1 = 0.8\,\text{µ}\mathrm{M}; Css=(1+0.8)/(5+1)=0.3µMC_{\text{ss}} = (1 + 0.8)/(5 + 1) = 0.3\,\text{µ}\mathrm{M}; J=5×0.31=0.5J = 5\times 0.3 - 1 = 0.5 subunidade por segundo, 1.35nm/s1.35\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}.

Exercício 9.6 ★★

A cinesina caminha a 800nm/s800\,\mathrm{nm}/\mathrm{s} com passos de 8nm8\,\mathrm{nm}, um ATP cada. Quantos ATP por segundo por motor? O axônio de um neurônio tem 1m1\,\mathrm{m}: quanto dura a viagem, e quantos ATP um motor gasta nela? Compare com o tempo de difusão da Proposição 9.6.

Solução

Solução de Exercício 9.6.

800/8=100800/8 = 100 ATP por segundo. O metro leva 1/(8×107)=1.25×1061/(8\times 10^{-7}) = 1.25\times 10^{6} s, cerca de duas semanas, e 1.25×1081.25\times 10^{8} passos e ATP. A difusão levaria 1600016\,000 anos: uma diferença de mil milhões de vezes.

Exercício 9.7 ★★

A miosina V dá passos de 36nm36\,\mathrm{nm} por ATP. Qual é sua força de parada máxima, e por que ela é menor que a da cinesina? Qual motor é mais adequado a carregar uma carga grande, e qual a mover-se depressa?

Solução

Solução de Exercício 9.7.

Fmax=8.3×1020/3.6×108=2.3pNF_{\max} = 8.3\times 10^{-20}/3.6\times 10^{-8} = 2.3\,\mathrm{pN}. A mesma energia espalhada por um passo mais longo dá menos força — uma alavanca mais longa. A cinesina (passo curto, 6pN6\,\mathrm{pN}) serve a cargas pesadas; a miosina V (passo longo) cobre mais distância por ATP e serve a um transporte rápido e leve.

Exercício 9.8 ★★

Preveja o efeito sobre uma célula em divisão, e sobre uma célula que rasteja, de (a) taxol, (b) colchicina, (c) citocalasina, (d) um inibidor de Rac, e explique cada um pelo mecanismo.

Solução

Solução de Exercício 9.8.

(a) O taxol congela os microtúbulos: o fuso não consegue buscar, capturar e corrigir, e a mitose para no ponto de checagem; a célula que rasteja continua a protrair, mas perde a polaridade de longo prazo. (b) A colchicina remove os microtúbulos: sem fuso, parada mitótica; o rastejamento continua sobre a actina, mas sem direção persistente. (c) A citocalasina capeia as extremidades farpadas: sem protrusão, sem rastejamento; a mitose prossegue, mas a citocinese falha, dando células binucleadas. (d) Inibição de Rac: sem lamelipódios, e portanto sem rastejamento; a divisão fica em grande parte inalterada.

Exercício 9.9 ★★

Num experimento de FRAP num lamelipódio, a fluorescência se recupera com meia-recuperação de 20s20\,\mathrm{s} até 90%90\,\% de seu valor inicial. Quais são o tempo de residência da actina na rede e a fração imóvel? Os speckles fluem para trás a 1.5µm/min1.5\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min} enquanto a borda avança a 1µm/min1\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}: a que taxa a actina está polimerizando na borda?

Solução

Solução de Exercício 9.9.

Tempo de residência da ordem do tempo de meia-recuperação, 20s20\,\mathrm{s} (constante de tempo 20/ln229s20/\ln 2 \approx 29\,\mathrm{s}); fração imóvel 10%10\,\%. A polimerização na borda precisa suprir tanto o avanço quanto o fluxo retrógrado: 1+1.5=2.5µm/min1 + 1.5 = 2.5\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}.

Exercício 9.10 ★★★

Explique a instabilidade dinâmica em termos do capuz de GTP e mostre por que uma população de microtúbulos mantida logo acima da concentração crítica se torna bimodal em comprimento, em vez de uniforme. O que a célula ganha com um comportamento que desperdiça GTP?

Solução

Solução de Exercício 9.10.

Uma extremidade em crescimento mantém um capuz de tubulina-GTP; atrás dele a hidrólise produz tubulina-GDP tensionada. A perda do capuz — um evento aleatório cuja probabilidade sobe quando o crescimento desacelera — libera a tensão e a extremidade encolhe depressa até que um novo capuz se forme. Logo acima da concentração crítica, cada microtúbulo está a cada momento ou com capuz e crescendo, ou sem capuz e colapsando, de modo que os comprimentos divergem numa população longa e numa que desaparece, em vez de se agruparem em torno de uma média. A célula ganha uma exploração rápida de seu volume e a capacidade de estabilizar seletivamente — uma extremidade mais que alcance um cinetócoro ou um sítio cortical é capturada e mantida, e as demais são recicladas em minutos: busca e captura.

Exercício 9.11 ★★★

Uma bactéria de 2µm2\,\text{µ}\mathrm{m} nada a 25µm/s25\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{s}. Na água, nessa escala, o arrasto viscoso domina e a célula para dentro de um nanômetro quando o motor para. Explique por que um movimento recíproco (um remo) não consegue propulsioná-la e uma hélice em rotação consegue, e estime o número de prótons que o motor gasta por segundo a 100Hz100\,\mathrm{Hz}.

Solução

Solução de Exercício 9.11.

Nessa escala a inércia é desprezível e as equações do fluido são reversíveis no tempo: um movimento que refaz a si mesmo (um remo que vai e volta) devolve o corpo ao ponto de partida, seja qual for a velocidade de cada remada. Uma hélice em rotação nunca refaz a si mesma — seu movimento é quiral e contínuo — e por isso produz empuxo líquido. A 100Hz100\,\mathrm{Hz}, com mil prótons por volta, 10510^{5} prótons por segundo por motor.

Exercício 9.12 ★★★

A síndrome de Kartagener — cílios imóveis — dá bronquite crônica, infertilidade masculina e, em metade dos pacientes, um coração do lado direito. Explique cada uma dessas coisas pela biologia do axonema, e diga por que a última afeta apenas metade.

Solução

Solução de Exercício 9.12.

Os cílios das vias aéreas não conseguem bater, o muco e as bactérias não são removidos, e as infecções voltam. Os flagelos dos espermatozoides, construídos sobre o mesmo axonema, são imóveis: infertilidade. No embrião, os cílios móveis do nó geram um fluxo para a esquerda que estabelece o eixo esquerda–direita; sem fluxo o lado é escolhido ao acaso, e por isso metade dos pacientes tem os órgãos invertidos.

9.7 Problema: um neutrófilo em movimento

Problema 9.1

Problema de fim de semana — o orçamento de actina de um neutrófilo contado, seu treadmilling calculado, a viagem de uma vesícula axônio abaixo cronometrada contra a difusão, a eficiência de um motor medida e a polimerização e o custo em ATP da frente de rastejamento resolvidos, terminando na taxa de treadmilling, no tempo para atravessar um axônio e no ATP que um lamelipódio queima por segundo

Dados: um neutrófilo de volume 300µm3300\,\text{µ}\mathrm{m}^{3} contém actina a 200µM200\,\text{µ}\mathrm{M}, metade polimerizada; uma subunidade acrescenta 2.7nm2.7\,\mathrm{nm} a um filamento. Constantes de taxa da actina como no Exemplo 9.3. Cinesina: passos de 8nm8\,\mathrm{nm}, 800nm/s800\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}, força de parada 6pN6\,\mathrm{pN}; hidrólise do ATP ΔG=50kJ/mol\Delta G = 50\,\mathrm{kJ}/\mathrm{mol}; kBT=4.1pNnmk_{B}T = 4.1\,\mathrm{pN}\,\mathrm{nm}; coeficiente de difusão da vesícula 1µm2/s1\,\text{µ}\mathrm{m}^{2}/\mathrm{s}; comprimento do axônio 1m1\,\mathrm{m}. O lamelipódio tem 20µm20\,\text{µ}\mathrm{m} de largura com 200200 filamentos por micrômetro de borda, avançando a 10µm/min10\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}; a rede é desmontada 3µm3\,\text{µ}\mathrm{m} atrás da borda.

Parte I — O orçamento de actina.

  1. Quantas moléculas de actina a célula contém, e quantas estão em filamentos?
  2. Que comprimento total de filamento é esse? Se o filamento médio tem 0.25µm0.25\,\text{µ}\mathrm{m}, quantos filamentos?
  3. A actina livre está a 100µM100\,\text{µ}\mathrm{M}, muito acima da concentração crítica da extremidade farpada. Por que os filamentos não crescem simplesmente até esgotar o monômero? (Duas proteínas.)
  4. Treadmilling in vitro: calcule CssC_{\text{ss}} e JJ a partir das constantes de taxa, e a velocidade de treadmilling em nanômetros por segundo e em micrômetros por minuto.
  5. Na célula a velocidade efetiva é de 1µm/min1\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}. Por qual fator os reguladores aceleram o polímero nu?
  6. Cada subunidade em treadmilling custa um ATP. Se todos os 2×1052\times 10^{5} filamentos fizessem treadmilling na velocidade celular, quantos ATP por segundo, e que fração é essa da renovação total de uma célula, de cerca de 10910^{9} ATP por segundo?

Parte II — Uma vesícula axônio abaixo.

  1. Quanto tempo uma vesícula puxada por cinesina leva para percorrer o axônio, e quantos passos e quantos ATP o motor gasta?
  2. Quanto tempo levaria a difusão por 1m1\,\mathrm{m}? E por 10µm10\,\text{µ}\mathrm{m}, a largura de um corpo celular? O que a comparação diz sobre onde as células podem se dar ao luxo de confiar na difusão?
  3. Calcule a energia por ATP em joules e em unidades de kBTk_{B}T.
  4. A força máxima de um motor com passos de 8nm8\,\mathrm{nm}, e a eficiência da cinesina na parada.
  5. Uma vesícula de raio 100nm100\,\mathrm{nm} num citoplasma de viscosidade 0.01Pas0.01\,\mathrm{Pa}\,\mathrm{s} (dez vezes a da água) que se move a 800nm/s800\,\mathrm{nm}/\mathrm{s} sofre um arrasto F=6πηrvF = 6\pi\eta r v. Calcule-o e compare com a força de parada: quantos motores são necessários?
  6. O axônio de um neurônio carrega cerca de 10410^{4} vesículas por vez. Qual é o consumo total de ATP do transporte, por segundo, e como ele se compara com os custos de disparo do neurônio, de cerca de 10910^{9} ATP por segundo? O que isso implica para um neurônio cujas mitocôndrias falham?

Parte III — A frente.

  1. Converta a velocidade da borda em nanômetros por segundo e calcule o número de subunidades por segundo que cada filamento precisa acrescentar para acompanhá-la.
  2. Quantos filamentos empurram a borda, e quantas subunidades por segundo toda a borda consome?
  3. Cada subunidade acrescentada é um ATP hidrolisado e depois reciclado. ATP por segundo para a protrusão; fração dos 10910^{9} por segundo da célula.
  4. A rede atrás da borda tem 3µm3\,\text{µ}\mathrm{m} de profundidade e se desmonta ali. Qual é o tempo de vida de uma subunidade na rede, e quantas subunidades há na rede a cada momento?
  5. A membrana resiste à protrusão com uma força de cerca de 1pN1\,\mathrm{pN} por filamento. Calcule o trabalho realizado por subunidade acrescentada (F×2.7nmF\times 2.7\,\mathrm{nm}) em kBTk_{B}T e diga se a catraca browniana — uma flutuação térmica que abre uma fresta de 2.7nm2.7\,\mathrm{nm} — é plausível.
  6. Por que a cauda de cometa da Listeria não precisa de motor, e com que rapidez ela pode empurrar se recrutar a mesma maquinaria?

Parte IV — Direção.

  1. O neutrófilo percebe um quimioatraente cuja concentração sobe 2%2\,\% ao longo de seus 10µm10\,\text{µ}\mathrm{m} de largura. Com 5000050\,000 receptores e KdK_{d} igual à concentração média, quantos receptores a mais estão ocupados na metade dianteira do que na traseira? (Ocupação θ=C/(C+Kd)\theta = C/(C + K_{d}); use metade dos receptores por lado.)
  2. A flutuação aleatória do número de ocupados de um lado é de cerca da raiz quadrada do número. A diferença da questão 19 é detectável num único instante? Como a média ao longo de alguns segundos ajuda?
  3. Que GTPase precisa estar ativada na frente e qual na retaguarda para que a célula vire rumo à fonte? O que faria uma célula com Rac constitutivamente ativa em toda parte?
  4. A célula alcança a bactéria em 3min3\,\mathrm{min} a partir de 30µm30\,\text{µ}\mathrm{m} de distância. Confira a velocidade contra os dados.
  5. Uma célula sem Arp2/3 se move por bolhas — protuberâncias de membrana movidas por pressão — em vez disso. Que etapa do ciclo foi substituída, e o que isso diz sobre o papel da actina nas outras etapas?
  6. O ciclo inteiro de rastejamento leva minutos, e ainda assim a célula vira em segundos quando o gradiente se desloca. Explique, usando o tempo de vida da rede da questão 16.
  7. Resuma: a velocidade de treadmilling in vitro (questão 4), o tempo de uma vesícula para percorrer o axônio (questão 7) e o ATP por segundo gasto na protrusão (questão 15).
Solução

Solução de Problema 9.1.

1. 300µm3=3×1013300\,\text{µ}\mathrm{m}^{3} = 3\times 10^{-13} L; ×2×104\times 2\times 10^{-4} mol/L =6×1017= 6\times 10^{-17} mol =3.6×107= 3.6\times 10^{7} moléculas; 1.8×1071.8\times 10^{7} em filamentos. 2. 1.8×107×2.7nm=4.9cm1.8\times 10^{7}\times 2.7\,\mathrm{nm} = 4.9\,\mathrm{cm} de filamento; a 0.25µm0.25\,\text{µ}\mathrm{m} cada, cerca de 2×1052\times 10^{5} filamentos. 3. A proteína de capeamento bloqueia a maioria das extremidades farpadas, e a profilina e a timosina-β\beta4 ligam os monômeros, de modo que a actina-ATP realmente livre fica perto da concentração crítica; o crescimento se restringe às extremidades que a célula descapeia. 4. Css=2.2/12.9=0.17µMC_{\text{ss}} = 2.2/12.9 = 0.17\,\text{µ}\mathrm{M}; J=11.6×0.171.4=0.6J = 11.6 \times 0.17 - 1.4 = 0.6 subunidade por segundo; 1.6nm/s1.6\,\mathrm{nm}/\mathrm{s} =0.1µm/min= 0.1\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}. 5. 1/0.1=101/0.1 = 10 vezes. 6. 1µm/min1\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min} =16.7nm/s=6.2= 16.7\,\mathrm{nm}/\mathrm{s} = 6.2 subunidades por segundo por filamento; ×2×105=1.2×106\times 2\times 10^{5} = 1.2\times 10^{6} ATP por segundo, cerca de 0.1%0.1\,\% da renovação da célula. 7. 1/(8×107)=1.25×1061/(8\times 10^{-7}) = 1.25\times 10^{6} s 14.5\approx 14.5 dias; 1.25×1081.25\times 10^{8} passos e ATP. 8. L2/2DL^{2}/2D: (1)2/(2×1012)=5×1011(1)^{2}/(2\times 10^{-12}) = 5\times 10^{11} s 16000\approx 16\,000 anos para um metro; (105)2/(2×1012)=50(10^{-5})^{2}/(2\times 10^{-12}) = 50 s para 10µm10\,\text{µ}\mathrm{m}. A difusão serve dentro de um corpo celular; qualquer distância maior precisa de motores. 9. 5×104/6.02×1023=8.3×10205\times 10^{4}/6.02\times 10^{23} = 8.3\times 10^{-20} J =20kBT= 20\,k_{B}T. 10. 8.3×1020/8×109=10pN8.3\times 10^{-20}/8\times 10^{-9} = 10\,\mathrm{pN}; eficiência 6/1060%6/10 \approx 60\,\%. 11. F=6π×0.01×107×8×107=1.5×1014F = 6\pi\times 0.01\times 10^{-7}\times 8\times 10^{-7} = 1.5\times 10^{-14} N =0.015pN= 0.015\,\mathrm{pN}, quatrocentas vezes abaixo da força de parada: um motor basta e sobra contra o arrasto viscoso; as cargas reais são obstáculos e amarras. 12. 104×100=10610^{4}\times 100 = 10^{6} ATP por segundo, 0.1%0.1\,\% do orçamento do neurônio: o transporte é barato. Mas os motores param no instante em que o ATP cai, de modo que uma falha das mitocôndrias priva a sinapse de tudo o que é feito no corpo celular — a falha do transporte axonal observada nas doenças neurodegenerativas. 13. 10µm/min10\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min} =167nm/s= 167\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}; 167/2.7=62167/2.7 = 62 subunidades por segundo por filamento. 14. 200×20=4000200\times 20 = 4000 filamentos; 4000×62=2.5×1054000\times 62 = 2.5\times 10^{5} subunidades por segundo. 15. 2.5×1052.5\times 10^{5} ATP por segundo, 0.025%0.025\,\% do orçamento. 16. 3µm/(10µm/min)=0.3min=18s3\,\text{µ}\mathrm{m}/(10\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}) = 0.3\,\mathrm{min} = 18\,\mathrm{s}; 2.5×105×18=4.5×1062.5\times 10^{5}\times 18 = 4.5\times 10^{6} subunidades na rede. 17. 1pN×2.7nm=2.7pNnm=0.66kBT1\,\text{pN}\times 2.7\,\text{nm} = 2.7\,\mathrm{pN}\,\mathrm{nm} = 0.66\,k_{B}T: uma flutuação dessa energia ocorre com probabilidade de cerca de e0.660.5e^{-0.66} \approx 0.5 — frestas de uma subunidade se abrem o tempo todo, e a catraca é inteiramente plausível. 18. A própria polimerização empurra, sendo a bactéria a “membrana” na frente de sua própria rede; com a maquinaria Arp2/3 da célula ela alcança a velocidade lamelipodial e mais — até 0.5µm/s0.5\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{s}, 30µm/min30\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}. 19. Em C=KdC = K_{d}, θ=1/2\theta = 1/2 e dθ/dC=1/(4C)\mathrm{d}\theta/ \mathrm{d}C = 1/(4C): uma diferença de 2%2\,\% em CCΔθ=0.005\Delta\theta = 0.005; com 2500025\,000 receptores por lado, 125125 a mais ocupados na frente. 20. Cada lado tem cerca de 1250012\,500 ocupados, flutuando em 12500110\sqrt{12\,500} \approx 110, de modo que a diferença entre os dois lados flutua em cerca de 160160: os 125125 se perdem no ruído a cada instante. Os receptores se religam cerca de uma vez por segundo; fazer a média ao longo de NN segundos reduz o ruído por N\sqrt{N} — dez segundos o levam a 5050 e o gradiente é lido. 21. Rac (com Cdc42) na frente, Rho na retaguarda. Com Rac ativa em toda parte a célula protrai por todos os lados, espalha-se e não vai a lugar nenhum. 22. 30/3=10µm/min30/3 = 10\,\text{µ}\mathrm{m}/\mathrm{min}: como foi dado. 23. A protrusão é substituída pelo bolhamento movido a pressão; a adesão e a contração continuam dependendo da actina e da miosina, e por isso a actina continua essencial para o resto do ciclo. 24. A frente é reconstruída a cada 18s18\,\mathrm{s}: um deslocamento da atividade de Rac redireciona a polimerização dentro de um tempo de vida da rede, a nova frente lidera, e as etapas lentas da retaguarda seguem. 25. Treadmilling in vitro 1.6nm/s1.6\,\mathrm{nm}/\mathrm{s}; cerca de 14.514.5 dias para percorrer o axônio; uns 2.5×1052.5\times 10^{5} ATP por segundo para a protrusão.

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